#157 Cattus (clic droit sur la photo pour zoomer)
Partie observée : Gros intestin de chat
Grossissement original : 50 x
Coloration : Trichrome de Goldner
Méthode de coloration :
REf. Goldner JA. Amer. J. Path. 14, 237, (1938).

- Déparaffiner, hydrater les coupes et, le cas échéant les dépirciquer.
- Colorer les noyaux à l'hémalun de Mayer 10 min. (ref. Mayer P. Uber das Färben mit Carmin, Cochenille und Hämatein Thonerde, Mitt. Zoll. Stat. Naepel. 10: 480-504 (1892))(1g. hématoxyline à dissoudre, en chauffant évent. dans 1000 ml H2O dist., puis ajouter 0.2 g. iodate de sodium et 50 g. de potassium, dissoudre en agitant sans chauffer, puis ajouter 50 g. hydrate de chloral et 1 g. acide citrique).
- Rincer à l'eau du robinet tiède: les noyaux doivent devenir bleu-violet.
- Différencier à l'alcool acide (1% HCl dans alcool 70°):le fond se décolore, les noyaux deviennent rouges.
- Bleuir à l'eau du robinet tiède: les noyaux doivent redevenir bleu-violet.
- Rincer à l'eau distillée.
- Colorer à la fuchsine ponceau 5 sec. à 2 min. (0.2 g. ponceau de xylidine, 0.1 g. fuchsine acide, 300 ml sol. acide acétique à 2%), devient rouge vif.
- Laver rapidement dans acide acétique 2%.
- Différencier et mordancer dans l'acide phosphomolybdique - orange G. 5 min. (empêche le cytoplasme de prendre le vert lumière; 3 g. ac. phosphomolybdique, 2 g. orange G, 100 ml H2O dist.). Vérifier au microscope, le tissu conjonctif et les os doivent être décolorés.
- Laver rapidement dans l'acide acétique 2%.
- Colorer au vert lumière 5 sec. à 5 min. (0.1 - 0.2 g. vert lumière, 100 ml sol. ac. acétique 2%).
- Laver rapidement dans l'acide acétique 2%.
- Passer dans l'alcool 95°.
Alcool 100°, xylolx, baume.

Résultat: noyaux: rouges, cytoplasmes: rouges, conjonctif: vert, mucus: vert pâle, sang: orange.
Remarque(s) :
Fixation: Duboscq-Brasil, coupe: 5 um.